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肥胖症和糖尿病有关系吗,脂肪与糖尿病胰岛素的关系

2024-03-26  本文已影响 140人 
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摘 要:目的:测定肥胖症患者内脏及皮下脂肪组织三酰甘油水解酶(ATGL)和激素敏感脂肪酶(HSL)mRNA的表达,探讨其与胰岛素敏感性的相关性。方法:应用荧光实时定量PCR法检测皮下、内脏脂肪组织ATGL和HSL mRNA的表达,应用HOMA-IR评估胰岛素敏感性,分析其与人体测量指标和代谢指标的相关性。结果:①肥胖组内脏与皮下脂肪组织ATGL mRNA及HSL mRNA表达量均低于正常对照组皮下脂肪组织;②皮下及内脏脂肪组织ATGL mRNA表达量与体质量指数(BMI)呈负相关;③皮下及内脏脂肪组织HSL mRNA表达量与BMI、腰围呈负相关。结论:①肥胖症脂肪组织ATGL mRNA及HSL mRNA表达降低;②ATGL及HSL与肥胖相关;③ATGL及HSL与胰岛素抵抗可能无明显相关性。

关键词:ATGL;HSL;肥胖症;脂肪组织;实时定量PCR   激素敏感脂肪酶(HSL)和脂肪组织三酰甘油水解酶(ATGL)是脂肪分解的两个主要限速酶。本研究以择期行腹部手术的正常体质量、肥胖症患者为观察对象,研究皮下及内脏脂肪组织ATGL和HSL mRNA的表达及其与有关临床指标的相关性,并探讨与胰岛素敏感性的关系。1 资料与方法1.1 一般资料:选择腹部手术的住院患者共21例,男12例,女9例,年龄(56±8)岁,排除恶性肿瘤、急性炎性反应、糖尿病及妊娠患者,无使用糖皮质激素、性激素、胰岛素、降脂药等药物病史。分为正常体质量组(11例)、肥胖组(10例)。肥胖的诊断标准参照WHO标准[1]。测量血压、身高、体质量、腰围、臀围,计算体质量指数(BMI)及腰臀比(WHR)。测定空腹血糖(FPG)、血脂、胰岛素(FNS)、糖基化血红蛋白(HbA1c)。取腹部皮下及内脏大网膜的脂肪组织,立即用液氮速冻后-80℃保存。采用SYBR GreenⅠ荧光实时定量PCR法测定脂肪组织ATGL和HSL mRNA的表达,采用比较阈值法表示目的基因的相对表达[2]。采用HOMA稳态模型评价胰岛素抵抗[3]。 1.2 统计学方法:数据以()表示,采用SigmaPlot 10.0+SigmaStat 3.5软件处理。相关性检验利用Spearman相关分析。以P<0.05为差异有统计学意义。2 结果2.1 临床指标分析:对照组与肥胖组间年龄、性别、BP、CHOL、TG、LDL-C、Apo-B、Apo-A1/B、FNS、HOMA-IR等比较差异均无统计学意义(P>0.05);肥胖组BMI、腰围、臀围、WHR、Apo-A1明显高于对照组(P<0.05)。2.2 两组脂肪组织ATGL mRNA实时定量PCR结果见表1。表1 两组脂肪组织ATGL mRNA实时定量PCR结果

分组

Ct36B4

CtATGL

△Ct

△△Ct

2-△△Ct

对照组皮下脂肪组织

20.40±0.38

30.37±1.12

9.97±1.00

0.00±1.00

1.0(0.50-2.00)

肥胖组皮下脂肪组织

20.67±0.35

32.20±0.56

11.53±0.60

1.56±0.60

0.34(0.22-0.51)①

对照组内脏脂肪组织

20.51±0.38

31.02±1.16

10.62±1.01

0.65±1.01

0.64(0.32-1.28)

肥胖组内脏脂肪组织

20.69±0.36

31.91±0.67

11.24±0.56

1.27±0.56

0.41(0.28-0.61)①

注:与对照组皮下脂肪组织比较,①P<0.052.3 两组脂肪组织HSL mRNA实时定量PCR结果见表2。表2 两组脂肪组织HSL mRNA实时定量PCR结果

分组

Ct36B4

CtHSL

△Ct

△△Ct

2-△△Ct

对照组皮下脂肪组织

20.40±0.38

26.63±1.37

6.23±0.45

0.00±0.45

1.0(0.73-1.36)

肥胖组皮下脂肪组织

20.67±0.35

28.40±1.04

7.73±0.36

1.50±0.36

0.35(0.28-0.45)①

对照组内脏脂肪组织

20.51±0.38

26.50±0.90

5.99±0.31

-0.24±0.31

1.18(0.95-1.46)

肥胖组内脏脂肪组织

20.69±0.36

28.05±0.92

7.36±0.27

1.13±0.27

0.46(0.38-0.55)①

注:与对照组皮下脂肪组织比较,①P<0.052.4 ATGL和HSL与临床指标的相关系数分析:皮下及内脏脂肪组织ATGL mRNA表达量与BMI呈负相关(r分别为-0.442和-0.518,P等于0.017和0.04)。皮下及内脏脂肪组织HSL mRNA表达量与BMI呈负相关(r分别为-0.623和-0.374,P分别为<0.001和等于0.045),与腰围呈负相关(r分别为-0.562和-0.389,P分别等于0.01和0.037)。ATGL mRNA和HSL mRNA表达量与胰岛素抵抗指数(HOMA-IR)无相关性。3 讨论  本研究结果显示,肥胖症皮下和内脏脂肪组织ATGL和HSL的mRNA的表达较正常体重者减少,提示ATGL和HSL与肥胖有相关性,肥胖状态时ATGL和HSL的表达会降低,也可能是由于ATGL和HSL表达减低而导致肥胖症的发生。目前Gaidhu在分子机制上的研究证实了ATGL和HSL在饮食诱导的肥胖有缺陷的脂肪动员和新陈代谢中起重要的作用[4]。  在临床上BMI与腰围是反映人体肥胖程度的指标,也是间接反映胰岛素敏感性的指标,但本研究中ATGL和HSL与BMI与腰围相关但与反映胰岛素敏感性的指标HOMA-IR无明显相关性,考虑与此次研究的样本量不足及本实验对象系中国人,肥胖者的BMI多数未达到国外研究时选择的BMI>30 kg/m2有关,如果在今后的实验中能扩大样本量,选择更肥胖的对象,将可获得更可信的结果。  Lafontan等指出脂肪水解作用是在严密的激素调控下进行的,胰岛素、儿茶酚胺类、利钠肽以及年龄、解剖部位、性别、基因型均发挥了调控作用[5]。对其作用机制的深入研究对许多临床代谢性疾病的防治提供思路,使其成为治疗肥胖和肥胖相关性疾病的药物新靶点。4 参考文献[1] World Healthy Organization,Western Pacific Region,The international Association for the Study of Obesity and the international Obesity Task Asia-Pacific perspective:redefining obesity and its treatment[M].Sydney,Australia:Health Communications Australia Pty Limited,2000:26.[2] Livak KJ,Schmittgen is of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-Delta Delta C(T) method[J].Methods,2001,25(4):402.[3] Matthews D R,Hosker J P,Rudenski A S,et tasis model assessment:insulin resistance and ?-cell function from fasting plasma glucose and insulin concentrations in man[J].Diabetologia,1985,28(7):412.[4] Gaidhu MP,Anthony NM,Patel P,et ulation of lipolysis and lipid metabolism in visceral and subcutaneous adipocytes by high-fat diet:role of ATGL,HSL,and AMPK[J].Am J Physiol,2010,298(4):961.[5] Lafotan M,Langin sis and lipid mobilization in human adipose tissue[J].Prog Lipid Res,2009,48(5):275.

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